前言
篇 生物化学与分子生物学实验
章 基础性实验
实验1 蛋白质的呈色反应、沉淀现象观察及等电点的测定
实验2 蛋白质含量的测定
实验3 丙二酸对琥珀酸脱氢酶的竞争性抑制作用
实验4 红细胞葡糖-6-磷酸脱氢酶活性测定
实验5 血清丙氨酸转氨酶活性测定（紫外速率法及改良穆氏法）
实验6 糖化血红蛋白的测定
实验7 血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳
实验8 血红蛋白的醋酸纤维薄膜电泳
实验9 血糖测定
实验10 胰岛素、肾上腺素对家兔血糖浓度的影响
实验11 血清总胆固醇测定
实验12 质粒DNA的提取、酶切与鉴定
实验13 酵母RNA的成分鉴定
实验14 PCR扩增G6PD基因外显子11-12片段
实验15 尿中酮体的检出
实验16 血清尿素氮测定（二乙酰一肟法）
第二章 综合性实验
实验17 真核细胞基因组DNA的提取、定量和纯度测定
实验18 小鼠基因组DNA的Southern blotting分析
实验19 小鼠脑组织总RNA提取与RT-PCR获取真核基因片段
实验20 pMD19-G6PD重组子的蓝白斑筛选及酶切鉴定
实验21 pThioHis（A）-G6PD重组表达质粒的鉴定
实验22 G6PD重组酶的诱导表达、分离及比活性测定
实验23 ATP、ADP和NADPH对G6PD酶促反应的影响
实验24 小鼠PKCe基因的克隆、鉴定及其6His融合蛋白的大肠杆菌表达和纯化
实验25 SDS-PAGE测定蛋白质的表观分子量
实验26 小鼠血清IgG的Western blotting分析
实验27 血红蛋白的等电聚焦分离及其等电点测定
实验28 醋酸纤维薄膜电泳技术分离乳酸脱氢酶同工酶
实验29 血清蛋白的盐析及清蛋白/球蛋白的测定
实验30 血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳分离及定量测定
实验31 酶的特异性及温度、pH、激活剂、抑制剂对酶活性的影响
实验32 小鼠肝细胞核的分离、纯化与鉴定
实验33 动脉硬化指数的计算
实验34 糖的硅胶G薄层层析分析鉴定
第三章 创新设计实验
实验35 乙醛脱氢酶2基因型的检测
实验36 针刺“足三里”穴位对家兔血糖浓度的双向调节作用
实验37 小鼠PKCε相互作用蛋白质的捕获、鉴定
实验38 小鼠肝总蛋白质的双向电泳分离
实验39 人血浆同型半胱氨酸的测定（ELISA方法）
实验40 自毁容貌综合征的生化与分子生物学分析
实验41 G6PD缺陷的诊断及其发病的分子基础
实验42 HL-60细胞中DAPK基因甲基状态的检测
实验43 胰岛素促进HepG2细胞对葡萄糖吸收的检测
第二篇 生物化学与分子生物学技术
第四章 分光光度技术
节 分光光度技术的基本原理
第二节 分光光度计的组成与结构
第三节 分光光度技术的应用
第五章 电泳技术
节 概述
第二节 几种常用电泳简介
第六章 层析技术
第七章 离心技术
节 离心技术的基本原理
第二节 离心机的类型
第三节 制备型离心的分离方法
第四节 离心操作的注意事项
第八章 聚合酶链反应与印迹技术
节 PCR技术
第二节 印迹技术
第九章 基因工程技术
节 基因工程技术的相关概念
第二节 基因工程技术的基本原理及技术路线
第三节 基因工程技术在医学领域的应用
第十章 荧光标记技术
节 荧光现象
第二节 荧光探针
第三节 荧光标记样品的检测
第十一章 RNA干扰技术
节 RNA干扰的作用机制
第二节 RNA干扰技术的应用
第十二章 生物芯片技术
节 基因芯片
第二节 蛋白质芯片
第十三章 双向凝胶电泳
第十四章 蛋白质三维结构建模
节 蛋白质结构相关知识
第二节 蛋白质结构预测实例
参考文献
附录一 生物化学与分子生物学常用数据库和软件
附录二 生物化学与分子生物学常用试剂和培养基的配制方法
附录三 生物化学及分子生物学实验常用缩略语
附录四 生物化学与分子生物学实验常用词中英文对照

朱月春、杨银峰主编的《生物化学与分子生物学实验教程》是为了适应高等医学院校的实验教学改革和发展需要而编写的。本教材由生物化学与分子生物学实验(包括基础性实验、综合性实验和创新设计实验)、生物化学与分子生物学技术两篇构成。实验内容既有基础性实验(蛋白质、核酸的分离纯化，酶学、糖类、脂类分析等)，也有来源于教师科研项目的综合性实验和创新设计实验，有利于培养学生的实践能力、综合分析能力。此外，本教材增加了RNA干扰、荧光标记技术等实验基础理论，作为实验的补充。附录中有常用仪器、技术等中英文词汇对照表。本教材内容较新颖，体系较完整，不同层次实验的培养目标有所侧重，便于不同层次学生选择。本教材可供医学院校本(专)科及研究生实验教学使用，也可作为教师、医师和技术人员的科研参考书。